image

7

REVISTA CON-CIENCIA N°1/VOL. 3 (2015) 69-76

image


image


PARISACA MAMANI, SANDRA1 BAUTISTA, ANGELA2

VASQUEZ MICHEL, ANETH1

Comparación del rendimiento del medio de cultivo Löwenstein-Jensen in house y Löwenstein-Jensen comercial, para el aislamientos de Mycobacterium tuberculosis de pacientes con tuberculosis pulmonar


image

FECHA DE RECEPCIÓN: 27 DE MAYO DE 2015 FECHA DE ACEPTACIÓN: 22 DE JUNIO DE 2015


Resumen

La tuberculosis (TB) se ha convertido en un problema de salud mundial. El año 2012 se reportaron 8,7 millones de casos nuevos. Para el diagnóstico de TB en nuestro medio se emplean dos métodos: la tinción Ziehl Neel- sen y cultivo. Los medios de cultivo que se utilizan son: Löwenstein-Jensen (LJ), Stone- brink y Ogawa. El LJ es el medio de referencia para la evaluación de nuevos sistemas para el diagnóstico de TB. El presente estudio eva- luó el rendimiento del medio LJ comercial y el LJ in house (estandarizado y preparado bajo normas del manual de procedimientos técnicos para Cultivo de micobacterias de la Red Nacional de Laboratorios de Tuberculo- sis de Bolivia.

Se procesaron 185 muestras de esputo

BK(+), sembrándose por duplicado en me- dio LJ in house y en medio LJ comercial. Me- diante el LJ in house se obtuvieron 172 cul- tivos positivos (93%), 9 (5%) negativos y 4 (2%) contaminados; mediante el LJ comer- cial se obtuvieron 148 positivos (80%), 8 ne-

Abstract

Tuberculosis (TB) has become a global health problem. In 2011 there were 8.7 mil- lion new cases. For TB diagnostic are used methods staining and solid media cultures

:Löwenstein-Jensen (LJ), Ogawa, Stone- brink. The LJ is the reference media culture for evaluation of new systems for the diag- nosis of TB. This study evaluated the perfor- mance of the commercial LJ culture media and LJ standardized by the National Tuber- culosis Laboratory Network.

185 sputum samples BK(+), being plat- ed in duplicate in the LJ in house medium and commercial LJ medium were processed. By in house LJ medium were obtainned, 172 positive cultures (93%), 9 (5%) negative and

4 (2%) contaminated; through commer- cial LJ were obtained 148 positive (80%), 8 negative (4%) and 29 (16%) contaminated. In in house LJ medium an eugónic develop- ment was obtained in 131 (76%) and disgón- ic development in 41 (24%) cultures; in com- mercial LJ we saw eugonic development in


image


1 Laboratorio de Microbiología Molecular, Instituto SELADIS, Fac. Cs. Farmacéuticas y Bioquímicas-UMSA.

2. Laboratorio Departamental de Control de la Tuberculosis, La Paz.


gativos (4%) y 29 (16%) contaminados. En el LJ in house se obtuvo un desarrollo eugónico en 131 (76%) cultivos y disgónico en 41(24%) cultivos; en el LJ comercial se obtuvo un de- sarrollo eugónico en 29 (20%) cultivos y desa- rrollo disgónico en 119(80%) cultivos. Al reali- zar la comparación entre el LJ in house y el LJ comercial se obtuvo un valor kappa de 0,96, demostrando así una fuerza de concordan- cia de 0,96 (casi perfecta).

Los resultados obtenidos demuestran que el medio LJ in house supera en rendi- miento al medio LJ comercial, ya que se ob- tiene un mejor desarrollo y un menor por- centaje de contaminación, facilitando de esta manera posteriores estudios de sensibilidad y resistencia a fármacos antituberculosos.

29 (20%) and disgonic development in 119 (80%) cultures. When comparing between in house LJ and commercial LJ a kappa val- ue of 0.96 was obtained, demonstrating as- trength of concordance of 0.96 (almost per- fect).

The results show that in house LJ medi- um (standardized by the National Tuberculo- sis Laboratory Network) surpass commercial LJ, as show better development and a lower percentage of contamination, thereby facili- tating further drug resistance studies.


PALABRAS CLAVE

Löwenstein-Jensen, Tuberculosis, Red Nacional de Laboratorios de Tuberculosis

KEY WORDS

Löwenstein-Jensen, Tuberculosis, National Tuberculosis Laboratory Network


INTRODUCCIÓN

image

La tuberculosis es una enfermedad infecto-contagiosa que actualmente se ha convertido en un problema de salud mundial. No puede ser considerada como una enfermedad del pasado, ya que actualmente ha vuelto a surgir como problema sanitario de primera magnitud, tanto en los países en vías de desarrollo como en los desarrollados, por las complicaciones que puede ocasionar. (Cárdenas R. 2014)

Al presente, más de 2 000 millones de personas, o sea, un tercio de la población global, están infectadas por el bacilo, y de esa cantidad, de 5 a 10 % se enferman o trasmiten la bacteria en algún momento de sus vidas. Cada segundo alguien contrae la infección y cada 20 segundos hay un fallecimiento por esta causa; además, una de 4 muertes está relacionada con el virus de inmunodeficiencia humana (VIH). Adicio- nalmente, si se utilizan o administran mal los medicamentos, puede presentarse la tuberculosis multirresistente. (Estrategia Alto a la Tuberculosis, 2012)

Anualmente en Bolivia se registran entre 6.000 a 7.000 casos nuevos de personas con TB. El año 2012, el Programa Nacional de Control de Tubercu- losis en Bolivia (PNCT), reportó 7.811 casos de Tuberculosis en todas sus for- mas, que representa una tasa de incidencia de 72,2 por 100.000 habitantes, de los cuales 6.139 son de TB pulmonar.(PNCT, 2013)

En la actualidad, el PNCT avala como pruebas de rutina para el diagnósti- co de tuberculosis dos métodos: la tinción Ziehl Neelsen (baciloscopia) y el cultivo en medios sólidos, pues las técnicas de biología molecular no están al alcance de cualquier Laboratorio (Westwood SA, 1993)

El cultivo permite con certeza realizar la confirmación del diagnóstico de la tuberculosis. Los medios de cultivo que se utilizan en los laboratorios que efectúan aislamiento de Micobacterias en la Red Nacional de Laboratorios


de Control de la Tuberculosis de Bolivia, son medios sólidos a base de huevo, Lowenstein Jensen (LJ), Stonebrink y Ogawa, que en este estudio los deno- minamos “IN HOUSE”, ya que fueron estandarizados por los Laboratorios de esta red y son actualmente preparados en el laboratorio de medios de culti- vo del Instituto de Laboratorios en Salud (INLASA) y distribuidos a nivel na- cional. (Camacho, 2011)

El medio Löwenstein-Jensen sigue siendo el de referencia para la valora- ción de los nuevos sistemas comerciales y se utiliza rutinariamente para el aislamiento de micobacterias de importancia clínica.

La importancia de contar con un medio de cultivo adecuado, radica en aislar M.tuberculosis a partir de muestras de escasa cantidad de bacilos, pau- cibacilares, en pacientes con sospecha de TB y radiografía normal. También es de gran importancia en el diagnóstico de la TB infantil y en pacientes con VIH/SIDA y que además propicie el crecimiento de cepas eugónicas, defi- niéndose como eugónico al crecimiento de colonias mayores a 1 mm de diá- metro y fáciles de separar de la superficie del medio, lo contrario a disgónico que es un crecimiento con colonias pequeñas menores de 1 mm. de diáme- tro, adheridas al medio, las mismas que no tendrán utilidad para realizar las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana correspondientes, además de pre- sentarse dificultades al momento de la lectura de resultados.

El presente estudio propone comparar los medios de cultivo Löwenstein- Jensen artesanal y cultivo Löwenstein-Jensen comercial para el aislamiento de M. tuberculosis, y determinar el mejor medio, que permita el aislamiento con menor porcentaje de contaminación, mejor tipo de crecimiento, a par- tir de muestras de esputo BK (+) provenientes de pacientes que acudieron al Laboratorio departamental de Control de Tuberculosis La Paz, durante febre- ro a octubre del 2013.


MATERIALES Y MÉTODOS

image

Material de estudio

El material de estudio estuvo constituido por 185 muestras de esputo de personas BK (+) de ambos sexos confirmadas por baciloscopia mediante tin- ción de Ziehl Neelsen, recolectadas por el Laboratorio Departamental de Con- trol de Tuberculosis de La Paz, que cumplieron con los criterios de inclusión.

Criterios de inclusión

Pacientes BK (+) de ambos sexos confirmado por baciloscopía con tinció- nZiehl Neelsen y que no hayan recibido tratamiento antimicrobiano.

Criterios de exclusión

Pacientes BK (+) que estén recibiendo tratamiento antimicrobiano.

Muestreo

La selección de la muestra se llevó a cabo mediante el muestreo no pro- babilístico de conveniencia


Toma de muestra y transporte

Cada muestra de esputo fue tomada por duplicado por personal especia- lizado del área, las muestras de esputo fueron obtenidas por expectoración del árbol bronquial, las cuales tuvieron un volumen aproximado de 2-5ml. Las muestras fueron recolectadas en recipientes con tapa, debidamente ro- tulados, en algunos casos los recipientes que contenían las muestras BK (+) y cumplían con los criterios de inclusión mencionados anteriormente, fueron inmediatamente transportadas y en otros casos se transportaron en un tiem- po máximo de 48 horas, al Laboratorio de Microbiología Molecular del Insti- tuto SELADIS de la Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímicas-UMSA. La alícuota duplicada se mantuvo en el Laboratorio de la Red Departamental de Control de Tuberculosis para su respectiva siembra.

Siembra en medios de cultivo

Cultivo en Löwenstein-Jensen in house: Una alícuota de la muestra se que- dó en el Laboratorio Departamental de Control de la Tuberculosis, para rea- lizar el respectivo cultivo. En este laboratorio se decontaminó la muestra me- diante el método de Petroff modificado, el cual utiliza NaOH (hidróxido de sodio) como solución digestiva. El medio de cultivo Löwenstein-Jensen sem- brado se incubo por 20 a 60 días.

Cultivo en Lowenstein Jensen comercial: Para dar objetividad al estudio no mencionamos marcas, aunque debe informarse que son medios prove- nientes de industria Norte Americana.

De forma paralela otra alícuota de la muestra fue llevada al Instituto SELA- DIS, donde se procedió a la decontaminación de la muestra mediante el mé- todo de NaOH-NALC (hidróxido de Sodio-N-acetil Lisina). Todas las mues- tras de esputo fueron digeridas y descontaminadas con solución digestiva (TB Prep Kit Red, Hardy Diagnostic). Un volumen igual de esputo se añadió a 2 ml de solución digestiva, se añadió 9 ml de solución tampón fosfato (pH 6,8). Para luego llevar a centrifugación durante 15 min a 3000g, se sembró dos go- tas del sedimento en un medio: Löwenstein-Jensen comercial y se llevó a in- cubar a 37ºC, controlando el crecimiento cada 10 días hasta el día 60.

Comparación de medios de cultivo

Para hacer la comparación de los medios de cultivo, antes menciona- dos, se procedió a observar los tubos con colonias con características mor- fológicas típicas de M. tuberculosis, luego se procedió a tomar nota de: Porcentaje de contaminación, tiempo de crecimiento, tipo de crecimiento (eugónico,disgónico) y número de colonias.

Identificación de M. tuberculosis: Se seleccionaron las colonias con carac- terísticas morfológicas típicas de M. tuberculosis, a partir de las cuales se rea- lizó: tinción de Ziehl Neelsen y prueba de la niacina, según la técnica descrita por el manual del fabricante.

Análisis Estadístico

Se describieron los resultados obtenidos en ambos medios de cultivo me- diante el número de casos observados y sus porcentajes.


Para estimar la concordancia de resultados obtenidos en ambos medios de cultivo de M. tuberculosis se utilizará el coeficiente de concordancia kappa.

RESULTADOS

image

De las 185 muestras, se obtuvieron en el Löwenstein-Jensen in house, 172 cultivos positivos (93%), 9(5%) cultivos negativos y 4 (2%) cultivos contamina- dos y en el Löwenstein-Jensen comercial se obtuvieron 148 (80%) cultivos po- sitivos, 8 (4%) cultivos negativos y 29 (16%) contaminados (tabla 1).

TABLA 1. Comparación de aislamientos positivos y contaminados de M. tuberculosis, obtenidos en medio LJ in house y LJ comercial, a partir de 185 muestras BK(+), procesadas en el Laboratorio Departamental de Control de Tuberculosis,La Paz y en el Laboratorio de

Microbiología Molecular, Instituto SELADIS.


LJ in house

LJ comercial

Nº %

Nº %

Positivo

172 93%

148 80%

Negativo

9 5%

8 4 %

Contaminado

4 2%

29 16%

Total

185 100%

185 100%


De los 172 cultivos positivos en el LJ in house, se obtuvieron 131(76%) cultivos con desarrollo eugónico y 41(24%) cultivos con desarrollo disgónico. En el LJ co- mercial de los 148 cultivos positivos, 29 (20%) cultivos presentaron un desarrollo eugónico y 119 (80%) cultivos presentaron un desarrollo disgónico (Tabla 2).

TABLA 2. Distribución de los tipos de desarrollo de M. tuberculosis en cultivo LJ in house y LJ comercial, a partir de cultivos positivos de muestras BK(+).

Procesadas en el Laboratorio Departamental de Control de tuberculosis y en el Laboratorio de Microbiología Molecular, Instituto SELADIS.


LJ artesanal

LJ comercial

Nº %

Nº %

Cultivos con desarrollo eugónico

131 76 %

29 20%

Cultivos con desarrollo disgónico

41 24 %

119 80%

Total

172 100%

148 100%


En cuanto al tiempo promedio de días de positividad (desarrollo de co- lonias) en el cultivo LJ in house (172 cultivos positivos) fue de 33 días y en el cultivo Lowenstein Jensen comercial (148 cultivos positivos) el promedio fue de 22 días (Tabla 3).

TABLA 3. Distribución de cultivos positivos según día de positividad en LJ in house y en el LJ comercial

Día de

LJ in house.


LJ comercial


positividad

Nº de cultivos

%

Nº de cultivos

%

15

0

0

37

25

20

73

42

87

59

40

86

50

24

16

60

13

8

0

0

TOTAL

172

100

148

100


Finalmente, para realizar la comparación estadística, entre el LJ in house y el LJ comercial se realizó una tabla de contingencia (Tabla 4), donde solo se tomaron en cuenta 155 cultivos, ya que 30 cultivos resultaron contaminados ya sea en el LJ in house, en el LJ comercial o en ambos cultivos.

TABLA 4. Tabla de contingencia, LJ in house y LJ comercial.


image

LJ in house Total


+

-


LJ

+

146

1

147

comercial

-

2

6

8

Total


148

7

155

A partir de la tabla 4 se pudo calcular el valor kappa, el cual fue de 0,96, indicador de que existe una relación casi perfecta entre el LJ in house y el LJ comercial. (Tabla 5)

TABLA 5. Valor de concordancia entre LJ in house y el LJ comercial.



Concordancia observada

0,98


Concordancia esperada

0,91


Valor Kappa

0,96


Fuerza de concordancia

Casi perfecta


DISCUSIÓN




El medio de Lowenstein Jensen (LJ) continúa siendo el método de refe- rencia para la valoración de los nuevos sistemas comerciales y se utiliza ruti- nariamente para el aislamiento de micobacterias de importancia clínica. (Se- púlveda A., 2001). El LJ in house (Camacho, 2011) es el medio de cultivo más utilizado en nuestro país, por lo cual se realizó la comparación entre este me- dio y un cultivo LJ comercial utilizado en otros países.

Mediante los resultados obtenidos podemos notar que existe una diferencia en cuanto al desarrollo de M. tuberculosis, entre el LJ in house y el LJ comercial. En el cultivo LJ in house se obtuvo un desarrollo óptimo con un porcentaje de contaminación dentro de lo normal, ya que una tasa de contaminación menor del 2% sugiere una decontaminación y digestión de la muestra severa, las tasas de contaminación mayores de 5-8% se deben a una insuficiente decontaminación. (Asencioc L, 2012).En el caso del LJ comercial la tasa de contaminación supera el 8% por lo cual podríamos pensar que existió una decontaminación insuficiente.

Otro factor por el cual se pudo haber obtenido una tasa elevada de con- taminación en el LJ comercial, fue el tiempo que transcurrió desde la recolec- ción de la muestra hasta su procesamiento; ya que existieron algunas mues- tras que fueron recolectadas y sembradas en el LJ in house, el mismo día; pero, tardaron un par de días hasta que llegaran al instituto SELADIS, para po- der ser sembradas en el LJ comercial y durante este periodo varias muestras pudieron no estar refrigeradas. El manual de procedimientos técnicos para cultivo de micobacterias indica que la muestra debe ser enviada inmediata- mente al laboratorio donde se realiza cultivo, en un periodo no mayor de los 5 días en condiciones de conservación adecuadas (protegida del calor), desde el momento de recolección de la muestra (Camacho, 2011)


Se obtuvo un mayor porcentaje de cultivos con desarrollo disgónico en el LJ comercial, esto se pudo deber a la mala conservación de algunas muestras, las cuales no fueron refrigeradas desde la recolección de la muestra hasta su llegada al Instituto SELADIS.

Debido al elevado porcentaje de contaminación y desarrollo disgónico en el cultivo LJ comercial, se acudió al Laboratorio de preparación de medios de cultivo del Instituto de Laboratorios en Salud INLASA, que es donde se rea- liza la preparación y posterior distribución de los medios de cultivo a todos los Laboratorios que conforman la Red Nacional de Tuberculosis, con el fin de distinguir algunas características del medio comercial como ser el pH de este medio, ya que en el catálogo no indicaba el pH al cual se encontraba el LJ comercial,obteniéndose un pH de 7,24.

El bacilo de la tuberculosis sobrevive y se multiplica a un pH cercano al neutro. Para neutralizar la muestra decontaminada con hidróxido de sodio se puede agregar una solución ácida gota a gota hasta que vire un indicador de pH. Este proceso debe ser controlado muy rigurosamente. Cualquier defec- to o exceso de la solución ácida origina un pH ácido no apto para el desarro- llo del bacilo. Para evitar este riesgo la norma actual refiere aplicar procesos de lavado con un buffer de pH neutro para eliminar la base utilizada para de- contaminar. (Barrera L., 2008)

El promedio del día de positividad en el LJ comercial fue menor que el LJ in house, esto se debe a que en el LJ comercial se iniciaron las lecturas de los culti- vos al día 15, a diferencia del LJ in house, donde se comenzaron las lecturas al día 20, debido a factor tiempo, ya que los laboratorios pertenecientes a la Red Na- cional de Laboratorios de Tuberculosis procesan una gran cantidad de muestras.


CONCLUSIONES

image

De acuerdo a los resultados obtenidos en este estudio se concluye que:


AGRADECIMIENTOS

image

REFERENCIAS


Asencioc L, Quispe N, Vásquez L. (2012) Pro- Programa Nacional de Control de la Tu- cedimiento para el control de calidad berculosis (2013). Recuperado de externo de la prueva rápida MODS (Mi- http://vigisalud.mspbs.gov.py/index. croscopicObservationDirectSusceptibi- php?option=com_content&view=articl lity) de sensibilidad a los fármacos anti- e&id=11&catid=23&IItemi=101 tuberculosos. Lima. Sepúlveda A., García-Martos P., Rodríguez

Barrera L., Malbran CG. (2008) Manual para M.J., MárquezA., PuertoJ.L., Saldarrea- el Diagnóstico de la Tuberculosis. 2da gaA.(2001) Evaluación del medio de Sto- parte. Cultivo.Organizacion Panameri- nebrink para la recuperación de mico- cana de la salud. bacterias.RevDiagnBiol v.50 n.4 Madrid

Camacho M., Magne M., Mollinedo JC., Cal- oct.-dic.

deron L. (2011) Manual de procesamien- Westwood SA. (1993) Diagnostic mycobac- tos técnicos para Cultivo de micobacte- teriology: currents challenges and tech- rias de la Red Nacional de Laboratorios nologies. Lab Med; 24: 357-361

de Tuberculosis. La Paz-Bolivia: PrintAr- World Health Organization.(2000)Anti-tu- tesGráficas. Nº 230. berculous drug resistence in the world. Cárdenas R., Rivero E., Quirós JL. (2014) Tu- Report No 2 Prevalence and trends.The berculosis: un desafío para la atención WHO/IUATLD Global project on anti- primaria de salud. MedicentroElectron. tuberculous drug resistence surveillan- ene.-mar.;18(1) ce. World Health Organization, Geneva

Estrategia Alto a la Tuberculosis [2012]. Dis- ponible en:http://www.sld.cu/sitios/tu- berculosis/

Organización Mundial de la Salud. (2013) Tuberculosis. Nota descriptiva N° 04. Washington: OMS; 2013 oct. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/ factsheets/fs104/es/index.html